Kit Ultra HiFidelity PCR

Pré-mistura de PCR hot-start de alta fidelidade, alta especificidade e alta eficiência.

O kit Ultra HiFidelity PCR é uma nova pré-mistura de amplificação por PCR de alta fidelidade adequada para clonagem e detecção relacionadas a PCR. A Ultra HiFi DNA Polymerase contida no kit é uma nova DNA polimerase rápida e de alta fidelidade desenvolvida por tecnologia de evolução molecular direcionada. Ele aumenta a afinidade da DNA polimerase aos modelos, melhora a velocidade de amplificação e a capacidade de extensão da enzima e aumenta a taxa de sucesso da PCR e o rendimento do produto.

Gato. Não Tamanho da embalagem
4992970 1ml
4992971 5 * 1ml
4992978 5 * 5 * 1ml

 

 


Detalhes do produto

Exemplo Experimental

Perguntas frequentes

Tags de produto

Recursos

■ Fácil de operar: este kit é fornecido como pré-mistura 2 × e a PCR pode ser realizada simplesmente adicionando modelos e primers.
■ Alta fidelidade: a fidelidade é 50 vezes maior que a da Taq polimerase.
■ Alta especificidade: Excelente desempenho de inicialização a quente para garantir a especificidade do produto.
■ Amplificação rápida: A velocidade de extensão pode atingir 10-15 seg / kb.
■ Forte extensibilidade: fragmentos de DNA de até 20 kb podem ser amplificados.
■ Ampla aplicabilidade: O kit contém PCR Enhancer e é adequado para a amplificação de alto GC e modelos complexos.

Especificação

Tipo: DNA polimerase de alta fidelidade
Velocidade de amplificação: 10-15 s / kb
Tamanho do fragmento: <20kb
Aplicações: amplificação por PCR de alta fidelidade, clonagem de genes, amplificação de modelos de alto GC, clonagem de genes de genomas complexos, amplificação de cDNA de alta fidelidade, detecção de SNP, mutação específica do local, etc.
Rendimento de extração de DNA de vários tecidos vegetais:
Nota: o rendimento do DNA depende dos tipos de amostra. Todos os materiais acima são de folhas tenras.

Todos os produtos podem ser personalizados para ODM / OEM. Para detalhes,clique em Serviço personalizado (ODM / OEM)


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    Experimental Example Hot-start para garantir a especificidade do produto
    Figura 1. Ultra HiFi tem excelente função de inicialização a quente para garantir a especificidade dos produtos de amplificação. O método de balizas moleculares foi aplicado (Ma et al., Anal Biochem, 2006).
    Experimental Example Excelente alta fidelidade, 50 vezes maior do que a Taq Polimerase
    Figura 2. A fidelidade do Ultra HiFi é 50 vezes maior do que a da Taq polimerase comum. A fidelidade da polimerização da Taq polimerase (sem atividade corretiva) é usada como referência.
    Experimental Example A amplificação rápida e fragmentos longos podem ser amplificados rapidamente
    Fig. 3. Ultra HiFi pode se estender até 5 seg / kb para fragmentos menores que 4 kb. Para fragmentos longos, o tempo de amplificação pode ser estendido apropriadamente. Para fragmentos com mais de 15 kb, a velocidade de extensão pode ser de até 30 s / kb. M: Marcador TIANGEN D15000
    Experimental Example Experimental Example Experimental Example Forte universalidade e alta especificidade, fácil leitura, alto GC e fragmentos longos de diferentes fontes
    Figura 4. Ultra HiFi tem alta especificidade para garantir a taxa de sucesso da amplificação e a quantidade de produto para diferentes tipos de modelos.
    A. Resultados de amplificação Ultra HiFi
    B. Resultados de amplificação de enzima Hi-Fi do Fornecedor K
    C. Resultados de amplificação de enzima Hi-Fi do Fornecedor N
    M: Marcador TIANGEN D15000
    Lane 1-5. Resultados da amplificação de modelos com comprimentos diferentes: 1. 750 bp; 2. 1 kb; 3
    2 kb; 4. 4 kb; 5. 6 kb
    Pista 6. Resultado da amplificação do molde GC elevado: 1915 bp (GC%: 70%);
    Lane 7-11. Resultado da amplificação de modelos de 2 kb de vários genomas: 7. Rato; 8
    Arroz; 9. Trigo; 10. Milho; 11. Bactérias;
    Lane 12-14. Resultado da amplificação do fragmento de 8 kb de comprimento: 12. Arroz; 13. Milho;
    Q: Sem bandas de amplificação

    Modelo A-1

    ■ O modelo contém impurezas de proteínas ou inibidores Taq, etc. —— Purifique o modelo de DNA, remova as impurezas de proteínas ou extraia o DNA do modelo com kits de purificação.

    ■ A desnaturação do modelo não está completa —— Aumente apropriadamente a temperatura de desnaturação e prolongue o tempo de desnaturação.

    ■ Degradação do modelo ——Reprepare o modelo.

    A-2 Primer

    ■ Baixa qualidade dos primers —— Sintetize novamente o primer.

    ■ Degradação do primer —— Aliquote os primers de alta concentração em um pequeno volume para preservação. Evite congelamento e descongelamento múltiplo ou criopreservação de 4 ° C por longo prazo.

    ■ Projeto inadequado de primers (por exemplo, o comprimento do primer não é suficiente, dímero formado entre os primers, etc.) -Redesign primers (evita a formação de primer dímero e estrutura secundária)

    A-3 Mg2+concentração

    ■ Mg2+ a concentração está muito baixa —— Aumente o Mg de maneira adequada2+ concentração: Otimize o Mg2+ concentração por uma série de reações de 1 mM a 3 mM com um intervalo de 0,5 mM para determinar o Mg ideal2+ concentração para cada molde e primer.

    Temperatura de recozimento A-4

    ■ A alta temperatura de recozimento afeta a ligação do primer e do template. ——Reduza a temperatura de recozimento e otimize a condição com um gradiente de 2 ° C.

    Tempo de extensão A-5

    ■ Tempo de extensão curto —— Aumente o tempo de extensão.

    Q: falso positivo

    Fenômenos: Amostras negativas também mostram as bandas da sequência alvo.

    Contaminação A-1 de PCR

    ■ Contaminação cruzada da sequência-alvo ou produtos de amplificação ——Cuidado para não pipetar a amostra que contém a sequência-alvo na amostra negativa ou derramar para fora do tubo de centrífuga. Os reagentes ou equipamentos devem ser autoclavados para eliminar os ácidos nucléicos existentes, e a existência de contaminação deve ser determinada por meio de experimentos de controle negativo.

    ■ Contaminação do reagente —— Aliquote os reagentes e armazene-os em temperatura baixa.

    A-2 Primer

    ■ Mg2+ a concentração está muito baixa —— Aumente o Mg de maneira adequada2+ concentração: Otimize o Mg2+ concentração por uma série de reações de 1 mM a 3 mM com um intervalo de 0,5 mM para determinar o Mg ideal2+ concentração para cada molde e primer.

    ■ Projeto de primer impróprio e a sequência alvo tem homologia com a sequência não alvo. —— Refaça os primers.

    Q: amplificação não específica

    Fenômenos: As bandas de amplificação de PCR são inconsistentes com o tamanho esperado, seja grande ou pequeno, ou às vezes ocorrem bandas de amplificação específicas e bandas de amplificação não específicas.

    A-1 Primer

    ■ Baixa especificidade do primer

    —— Primer de redesenho.

    ■ A concentração do primer está muito alta —— Aumente adequadamente a temperatura de desnaturação e prolongue o tempo de desnaturação.

    A-2 Mg2+ concentração

    ■ O Mg2+ a concentração é muito alta —— Reduza adequadamente a concentração de Mg2 +: Otimize o Mg2+ concentração por uma série de reações de 1 mM a 3 mM com um intervalo de 0,5 mM para determinar o Mg ideal2+ concentração para cada molde e primer.

    Polimerase A-3 Termostável

    ■ Quantidade excessiva de enzima - reduza a quantidade de enzima de forma adequada em intervalos de 0,5 U.

    Temperatura de recozimento A-4

    ■ A temperatura de recozimento está muito baixa —— Aumente apropriadamente a temperatura de recozimento ou adote o método de recozimento de dois estágios

    Ciclos de PCR A-5

    ■ Muitos ciclos de PCR —— Reduza o número de ciclos de PCR.

    Q: Bandas irregulares ou manchadas

    A-1 Primer—— Especificidade pobre —— Desenhe novamente o primer, mude a posição e o comprimento do primer para aumentar sua especificidade; ou realizar PCR aninhado.

    DNA de modelo A-2

    ——O modelo não é puro —— Purifique o modelo ou extraia o DNA com kits de purificação.

    A-3 Mg2+ concentração

    ——Mg2+ a concentração é muito alta —— Reduza o Mg de maneira adequada2+ concentração: Otimize o Mg2+ concentração por uma série de reações de 1 mM a 3 mM com um intervalo de 0,5 mM para determinar o Mg ideal2+ concentração para cada molde e primer.

    A-4 dNTP

    —— A concentração de dNTPs está muito alta —— Reduza a concentração de dNTP de forma adequada

    Temperatura de recozimento A-5

    —— Temperatura de recozimento muito baixa —— Aumente apropriadamente a temperatura de recozimento

    Ciclos A-6

    —— Muitos ciclos —— Otimize o número do ciclo

    P: Quanto DNA modelo deve ser adicionado em um sistema de reação de PCR de 50 μl?
    ytry
    P: Como amplificar fragmentos longos?

    O primeiro passo é escolher a polimerase apropriada. A polimerase Taq regular não pode ser revisada devido à falta de atividade da exonuclease 3'-5 'e a incompatibilidade reduzirá muito a eficiência de extensão dos fragmentos. Portanto, a polimerase Taq regular não pode amplificar com eficácia fragmentos alvo maiores que 5 kb. A polimerase Taq com modificação especial ou outra polimerase de alta fidelidade deve ser selecionada para melhorar a eficiência da extensão e atender às necessidades de amplificação de fragmentos longos. Além disso, a amplificação de fragmentos longos também requer o ajuste correspondente do desenho do primer, tempo de desnaturação, tempo de extensão, pH do tampão, etc. Normalmente, os primers com 18-24 bp podem levar a um melhor rendimento. A fim de evitar danos ao molde, o tempo de desnaturação a 94 ° C deve ser reduzido para 30 segundos ou menos por ciclo, e o tempo para aumentar a temperatura para 94 ° C antes da amplificação deve ser inferior a 1 minuto. Além disso, definir a temperatura de extensão em cerca de 68 ° C e projetar o tempo de extensão de acordo com a taxa de 1 kb / min pode garantir a amplificação eficaz de fragmentos longos.

    P: Como melhorar a fidelidade da amplificação do PCR?

    A taxa de erro de amplificação por PCR pode ser reduzida usando várias DNA polimerases com alta fidelidade. Entre todas as Taq DNA polimerases encontradas até agora, a enzima Pfu tem a menor taxa de erro e a maior fidelidade (ver tabela anexa). Além da seleção da enzima, os pesquisadores podem reduzir ainda mais a taxa de mutação da PCR otimizando as condições de reação, incluindo a otimização da composição do tampão, a concentração da polimerase termoestável e a otimização do número do ciclo da PCR.

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